Nicht-tuberkulöses Mykobakterium

Mykobakterien sind unbewegliche, nicht Sporen bildende Stäbchenbakterien. Sie sind obligat aerob, sodass sie sich unter sauerstofffreien Bedingungen nicht vermehren können. Viele Erreger haben eine lange Generationszeit von 12 bis 20 Stunden, wobei ein lipidhaltiger Nährboden für das Wachstum gegeben sein muss.

Mykobakterien lassen sich prinzipiell nur schwach nach Gram anfärben, da ihre Zellwand im Gegensatz zu anderen grampositiven Bakterien über einen hohen Anteil an Lipiden verfügt, die den Indikator-Farbstoff schlecht aufnehmen und speichern können. Trotzdem werden sie zu den grampositiven Stäbchen gezählt.

Das Merkmal, das alle Mykobakterien gemeinsam haben, ist die Säurefestigkeit. Während der sogenannten Ziehl-Neelsen-Färbung wird der Farbstoff Karbolfuchsin aufgenommen, aber unter Einwirkung von einer Salzsäure-Alkohol-Mischung nicht wieder abgegeben. Dieses Phänomen basiert auf dem Vorhandensein von Wachsen, langkettigen Mykolsäureverbindungen in der Zellwand, die dem Erreger eine Säureresistenz verleihen. Sie ermöglicht dem Bakterium eine Magenpassage ohne durch die Magensäure abgetötet zu werden. Mykobakterien befallen im menschlichen Wirtsorganismus vor allem Phagozyten (z.B. Makrophagen), wodurch eine spezifische Wirtsreaktion ausgelöst wird.

Zu den atypischen Mykobakterien gehören mehr als 170 verschiedene Arten, u.a.:

• Mycobacterium abscessus
• Mycobacterium-avium-Komplex (MAC)
  • Mycobacterium avium
  • Mycobacterium intracellulare
  • Mycobacterium chimaera
• Mycobacterium chelonae
• Mycobacterium fortuitum
• Mycobacterium genavense
• Mycobacterium gordonae
• Mycobacterium haemophilum
• Mycobacterium immunogenum
• Mycobacterium kansasii
• Mycobacterium lepramurium
• Mycobacterium malmoense
• Mycobacterium marinum
• Mycobacterium paratuberculosis
• Mycobacterium scrofulaceum
• Mycobacterium simiae
• Mycobacterium szulgai
• Mycobacterium terrae
• Mycobacterium ulcerans
• Mycobacterium xenopi

Im Vergleich zu den typischen Mykobakterien können sich NTM teilweise schneller vermehren und weisen häufig eine stärkere Resistenz gegenüber Antibiotika auf.

MOTT kommen ubiquitär in der Umwelt (Wasser, Boden) und in der Schleimhautflora von Mensch und Tier vor. Einige Subspezies bewohnen dabei spezifische Nischen, z.B.:

• Mycobacterium simiae: Grundwasser
• Mycobacterium fortuitum: Fußbäder
• Mycobacterium immunogenum: Flüssigkeiten zur Metallverarbeitung

Inzidenz und Prävalenz von NTM-Infektionen sind weltweit betrachtet höher als die der Tuberkulose. Da die Bakterium im Sputum von vielen Patienten nachweisbar sind, ist es entscheidend, zwischen einer harmlosen Kolonisation und einer Infektion zu unterscheiden.

Solange die Immunabwehr nicht gestört ist oder umgangen wird, verursachen die meisten NTM beim Menschen nur selten Erkrankungen. Eine direkte Übertragung von Mensch zu Mensch ist sehr selten und fast nur bei Patienten mit Mukoviszidose beschrieben. Risikofaktoren für eine Erkrankung sind:

• Bronchiektasen (z.B. bei Mukoviszidose oder primärer Ziliendyskinesie)
• COPD
• Inokulation z.B. im Rahmen einer Liposuktion, eines Traumas oder eines kardiochirurgischen Eingriffs
• HIV-Infektion
• Therapie mit TNF-α-Blocker (z.B. Infliximab, Etanercept)
• genetische Faktoren: z.B. Mutationen von Interferon-γ-Rezeptor, STAT1, IL-12-Rezeptor, GATA2

Nicht-tuberkulöse Mykobakterien befallen vor allem die Lunge, die Lymphknoten oder die Haut. In manchen Fällen kommt es zu einer generalisierten Infektion.

Eine Lungeninfektion ist in Industrieländern die häufigste Form einer atypischen Mykobakteriose. Sie wird v.a. durch Erreger des Mycobacterium-avium-Komplexes hervorgerufen. Betroffen sind insbesondere Frauen in der 6. und 7. Lebensdekade. Typische Symptome sind ein chronischer Hustenreiz und eine langsam progrediente Erschöpfung.

Weiterhin kann Mycobacterium kansasii ein der Tuberkulose ähnliches klinisches Bild mit Hämoptysen, Thoraxschmerzen und Kavernenbildung hervorrufen. Rasch wachsende NTM (z.B. Mycobacterium abscessus) sind mit ösophagealen Motilitätsstörungen (z.B. Achalasie) assoziiert.

Die häufigste Infektion durch NTM bei Kleinkindern in Industrieländern ist die zervikale Lymphadenopathie. Sie wird v.a. durch MAC verursacht und zeigt sich als schmerzlose, indurierte Schwellung ohne systemische Krankheitszeichen. Auch intrathorakale Lymphknoten können isoliert betroffen sein. Diskutiert wird eine Übertragung durch infizierte Hühner.

Eine kutane Infektion mit NTM setzt i.d.R. eine geschädigte Haut als Eintrittspforte voraus. Haupterreger sind Mycobacterium fortuitum (nach Fußbädern) sowie Mycobacterium abscessus und Mycobacterium chelonae über kontaminierte chirurgische Instrumente. Die Hautinfektion manifestiert sich in Form von schmerzhaften, erythematösen Abszessknötchen ohne systemische Krankheitszeichen.

Mycobacterium marinum kann durch Schwimmbäder, Aquarien und Fischschuppen übertragen werden. Die Papeln oder Ulzera werden auch als Schwimmbadgranulom bezeichnet. Bei fortgeschrittener Infektion kann es zu einer Tendinitis (v.a. des Handgelenks) kommen.

Mycobacterium ulcerans kommt v.a. in tropischen Gewässern Afrikas vor. Infektionen entstehen nach Hautverletzungen oder Insektenbissen durch Kontakt zu kontaminiertem Wasser. Hauptsymptome sind schmerzlose Ulzera (Buruli-Ulkus) und eine Osteomyelitis.

Generalisierte Mykobakterien werden v.a. durch MAC oder Mycobacterium kansasii bei Patienten mit fortgeschrittener HIV-Infektion hervorgerufen. Haupteintrittspforte ist der Darm mit Ausbreitung in die Blutbahn und das Knochenmark. Der klinische Verlauf ist unspezifisch mit Abgeschlagenheit, Fieber, Gewichtsverlust, Organvergrößerungen, Lymphknotenschwellungen und Anämie.

Die Nachweismethoden sind prinzipiell identisch mit denen zum Nachweis von Tuberkulose. Zu untersuchendes Material kann je nach Befall aus Wunden, Sputum, einer BAL, Blut, dem Urin sowie Stuhl oder Magensaft gewonnen werden.

• Ziehl-Neelsen-Färbung: Eine Spezialfärbung zum Nachweis von säurefesten Stäbchen. Sie ermöglicht jedoch keine Unterscheidung zwischen Mycobacterium tuberculosis und MOTT.
• Kinyoun-Färbung
• Kultur: Auf Spezialnährböden (z.B. Löwenstein-Jensen-Agar) oder in bestimmten Flüssigmedien. Problematisch für den Nachweis sind die z.T. langen Generationszeiten (18-20 Stunden), deshalb muss die Bebrütungszeit ggf. noch über die bei Mykobakterien übliche Dauer von 6-8 Wochen hinaus ausgedehnt werden. Bei Verdacht auf Infektion mit atypischen Mykobakterien sollte dem Labor diese Fragestellung mitgeteilt werden. Die Gruppeneinteilung nach Runyon anhand Wachstumsgeschwindigkeit und Pigmentbildung hilft bei der Differenzierung.
• Molekularbiologische Nachweismethoden
  • Polymerase-Kettenreaktion (PCR)
  • DNA-Sequenzierung
• Bildgebung (Röntgen-Thorax, CT-Thorax):
  • Die klassische (kavitäre) Form ähnelt der postprimären Tuberkulose: Oberlappen-betonte heterogene Konsolidierungen (segmental, lobär oder multifokal), Kavitäten (ca. 45 %), Bronchialwandverdickungen und als Zeichen der aktiven endobronchialen Dissemination zentrilobuläre und azinäre Lungenrundherde mit Tree-in-Bud-Muster sowie lobuläre Konsolidierungen.
  • bronchiektatische Form (NTMB): Bronchiektasen in Mittellappen und Lingula sowie Tree-in-Bud-Muster, insbesondere bei älteren Frauen (Lady-Windermere-Syndrom)

Je nach Spezies sind verschiedene Therapieansätze möglich. MOTT sind oft resistent gegen Isoniazid und oft auch gegen viele andere Antituberkulotika. Eine Resistenztestung ist in der Regel nur bei MAC für Clarithromycin und bei Mycobacterium kansasii für Rifampicin indiziert. Um eine Resistenzentwicklung zu vermeiden, werden mehrere Antibiotika kombiniert eingesetzt.

Bei MAC-Infektionen werden i.d.R. ein Makrolid (Clarithromycin oder Azithromycin) sowie Ethambutol und ein Rifamycin (Rifampicin oder Rifabutin) eingesetzt. Bei HIV-Patienten müssen Wechselwirkungen zwischen Rifamycinen und antiretroviralen Medikamenten beachtet werden. Meist wird die Behandlung 12 Monate nach negativem Kulturergebnis fortgesetzt. Weitere Substanzen zur MAC-Behandlung sind intravenöse oder inhalative Aminoglykoside, Fluorchinolone und Clofazimin. Bei Patienten mit einer Makrolidresistenz kommen chirurgische Verfahren (z.B. Resektion von ausgeprägten Bronchiektasen) infrage.

Bei Infektion mit Mycobacterium kansasii werden Isoniazid (300 mg/d), Rifampicin (600 mg/d) und Ethambutol (15 mg/kgKG/d) verwendet. Weitere Wirkstoffe sind Clarithromycin, Fluorchinolone und Aminoglykoside. Nach negativem Kulturergebnis wird die Therapie für ein weiteres Jahr fortgesetzt.

Bei Mycobacterium marinum sind Kombinationen aus einem Makrolid, Ethambutol und einem Rifamycin empfohlen. Auch wirksam sind Sulfamethoxazol, Doxycyclin und Minocyclin. Die Behandlung wird 1–2 Monate über die klinische Ausheilung der Weichteilinfektion hinaus fortgeführt.

Die Therapie anderer atypischer Mykobakteriosen ist weniger genau definiert. Generell sind Makrolide und Aminoglykoside wirksam.

Eine MAC-Prophylaxe kann bei HIV-Patienten ab einer CD4-Zahl < 50/µl erwogen werden, wenn sich die Einleitung der antiretroviralen Therapie um mehr als 4 Wochen verzögert. Eingesetzt werden Azithromycin (1250 mg wöchentlich), Clarithromycin (1000 mg/d) oder Rifabutin (300 mg/d).

• Schönfeld N, Haas W et al. Empfehlungen zur Diagnostik und Therapie nichttuberkulöser Mykobakteriosen, Pneumologie 2013; 67: 605-633, abgerufen am 21.06.2021