Stärkeagar

Stärkeagar wurde das erste Mal von Edward Vedder zur Kultivierung von Neisseria spp. im Jahr 1915 benutzt. Davor wurde Kalbsblutagar verwendet, auf dem man die Kulturen alle 2-3 Tage transferieren musste. Auf Stärkeagar haben die Neisseria-Kulturen bis zu 40 Tage überlebt.

Stärkeagar enthält pro Liter destilliertes Wasser 3g Rindfleischextrakt, 10g Stärke (präferiert Maisstärke) und 12g Agar-Agar.

Stärkeagar weist die Fähigkeit von Mikroorganismen nach, die extrazellulären Enzyme α-Amylase und oligo-1,6-Glucosidase zu produzieren. Sie diffundieren in den Stärkeagar und hydrolysieren die Stärke, indem sie die glykosidischen Bindungen zwischen den Glucose-Bausteinen aufbrechen. Die Amylase-Produkte werden dann in die Zelle aufgenommen und verstoffwechselt.

Nach Inkubation der Kulturen (1-5 Tage bei 35°C +/- 2°C) kann mithilfe von Lugol'scher Lösung oder einer anderen Iod-Lösung das Amylaseverhalten nachgewiesen werden. Lugol'sche Lösung reagiert mit vorhander Stärke und färbt den Agar blau-schwarz.

• Positiver Amylase-Nachweis: Aufhellungszone (klarer Hof) um die Kolonie (Stärke wurde hydrolysiert)
• Negativer Amylase-Nachweis: gleichmäßig blau-schwarze Färbung

Stärkeagar wird auch zur Differenzierung von Mitgliedern verschiedener Gattungen verwendet, die sowohl Amylase-positive als auch Amylase-negative Arten beinhalten, darunter Streptococcus spp., Clostridium spp., Corynebacterium spp., Fusobacterium spp., Enterococcus spp., Pseudomonas spp. und Bacillus spp.

• Lal A et al.; Starch Agar Protocol, American Society for Microbiology, 2012
• Edward B. Vedder, Starch Agar, A Useful Culture Medium,, The Journal of Infectious Diseases, 1915